正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义９�/span>

活性氧(Reactive oxygen species, ROS)包括超氧自由基、过氧化氢、及其下游产物过氧化物和羟化物等，研究表明，机体 95%以上的活性氧(ROS)都来自于线粒体，其失衡所致的氧化应激与细胞生长增殖、发育分化、衰老和凋亡以及许多生理和病理过程有关、�/span>

正常情况下，细胞内抗氧化防御系统与氧自由基处于平衡状态，细胞内活性氧(ROS) 水平维持在较低的生理范围；在病理情况下，细胞内抗氧化系统与氧自由基的平衡被打破， 细胞内活性氧水平过多，就可破坏线粒体酶类、脂类和核酸，使机体出现氧化应激，同时， 活性氧还可攻击线粒� DNA 产生氧化损伤，导致线粒体 ATP 合成减少、线粒体膜电位破坏等结构和功能变化、�/span>

因此，通过检测活性氧的变化来判断线粒体的功能是否正常具有重要意义、�/span>

测定原理９�/span>

荧光探针-还原型二氯荧光素 (2', 7'-dichlorodihy drofluorescin diacetate, DCFH-DA)可扩散通过线粒体膜，在线粒体内被酯酶水解，形成无荧光的 DCFH，DCFH 迅速与 ROS 反应生成荧光物—氧化型二氯荧光�?2', 7'-dichlo rofluorescin, DCF)� 根据上述原理设计了利用荧光法直接定量检测线粒体 ROS 产生速率的方法。将荧光强度随时间变化的数据点拟合，线性回归直线斜率与 ROS 产生的速率呈正比、�/span>

需自备的仪器和用品９�/span>

多功能酶标仪、恒温培养箱、分析天平、可调式移液器、冰、蒸馏水、�/span>

试剂组成和配制：

试剂一：液� 120 mL×1 �? 4℃保存；

试剂二：液体 50 mL×1 瓶，4℃保存；

试剂三：液体 1.5 mL×1 �?-20℃保存；

试剂四：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加� 6 mL 试剂二充分溶解；

试剂五：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加� 6 mL 试剂二充分溶解；

试剂六：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加� 6 mL 试剂二充分溶解；

试剂七：液体×1 �? 避光-20℃保存；临用前用试剂二稀� 300 倍后使用：�/span>

线粒体提取：

1、准确称� 0.1g 组织或收� 500 万细胞，加入 1mL 试剂一� 10uL 试剂三，用冰浴匀浆器或研钵匀浆、�/span>

2、将上述匀浆液� 600g(离心�?�?℃离� 5min、�/span>

3、弃沉淀，将上清液移至另一离心管中�?1000g�?℃离� 10min、�/span>

4、弃上清，沉淀中加� 200μL 试剂二重悬、�/span>

测定步骤９�/span>

1� 多功能酶标仪预热 30min 以上，调节激发光 499nm，发射光 521nm、�/span>

2. 在黑色不透光 96 孔板中加入下列试剁�/span>

试剂名称(μL)	测定箠�/span>	空白箠�/span>
线粒体悬涱�/span>	20
试剂事�/span>		20
试剂囚�/span>	50	50
试剂亓�/span>	50	50
试剂�?/span>	50	50
试剂丂�/span>	30	30
混匀�?7℃避光孵� 15min、�/span>

孵育完成后，� 37℃恒温下测定 10min 内荧光强度，激发波� 499nm，发射波� 521nm� 记录 10min 内的荧光值变化、�/span>

ROS 产生速率计算９�/span>

对采样数据点即荧光强度随时间的变化进行线性回归拟合处� ,计算出回归系数，即直线斜�?k)。实际线粒体 ROS 产生速率等于样本荧光强度随时间变化的数据点线性回归直线斜�?k 测定)减去本底荧光强度随时间变的数据点线性回归直线斜�?k 空白)、�/span>

(1)按样本鲜重计算：� g 组织线粒体每秒钟荧光单位的变�?� u/ s/g 鲜重

ROS 产生速率(u/ s/g 鲜重)=(k 测定-k 空白)/(V 样÷V 总×W)=10×(k 测定-k 空白)÷W

(2)按样本蛋白浓度计算：每毫克蛋白线粒体每秒钟荧光单位的变化 u/ s/mg prot、�/span>

ROS 产生速率(u/ s/ mg prot)=(k 测定-k 空白)/(V 样÷V 总×Cpr)=10×(k 测定-k 空白)÷Cpr

V 样：加入样本体积�?.02 mL；V 样总：悬液体积�?.2 mL；W: 样本鲜重，g；Cpr: 样本蛋白浓度，mg/mL、�/span>