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产品介绍
果胶裂解?EC 4.2.2.10)是果胶酶的重要组成部分,催化果胶分子链的消除裂解。来源比较广泛,主要来源于微生物,在食品加工工业中提高果汁产量方面有重要意义,在减少环境污染和降低能源消耗方面也具有潜在的应用价值、/span> 果胶裂解酶作用于果胶中的α-1,4糖苷键,生成在还原端C4和C5之间位置具有不饱和键的不饱和寡聚半乳糖醛酸,?35nm处有特征吸收峰,测定235nm下吸光度的上升来表示果胶裂解酶的活性、/span> 注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测、/span> 产品组成9/strong>
溶液的配制: 试剂一:溶液中如果有沉淀存在,可?0℃水浴助溶、/span> 试验中所需的仪器和试剂: 紫外分光光度?酶标仪、台式离心机、恒温水浴锅、微量石英比色皿/96孔UV板、可调式移液枪、研?匀浆器、冰和蒸馏水、/span> 操作步骤 (仅供参? 9/strong> 一、样品处理理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文? 1.组织:按照组织质?g):提取液体积(ml) 1??0的比?建议称取 0.1g组织,加 1ml提取?,进行冰浴匀浆?0000g ?℃离 10min,取上清,置冰上待测、/span> 2.细菌、真菌:按照细胞数量(104?:提取液体积(ml) 500?000?的比?建议 500万细胞加?ml提取?,冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超 3秒,间隔 7秒,总时 3min);然 10000g?℃离 10min,取上清置于冰上待测、/span> 3.培养液:直接测定、/span> 二、测定步骣/span> 1.分光光度计或酶标仪预 30min以上,调节波长至 235nm,蒸馏水调零、/span> 2.操作表:
计算ΔA测定箠A2测定?A1测定管,ΔA空白箠 A2空白?A1空白管,ΔA=ΔA测定?ΔA空白管、/span> 三、果胶裂解酶活性计箖/span> A、按微量石英比色皿计算: 1.按照蛋白浓度计算 酶活性定义: 40℃,pH5.5条件下,每毫克蛋白每分钟分解果胶产生 1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位、/span> PL活?U/mg prot)=ΔA÷(ε×d)×V反总?09÷(V样×Cpr)÷T=64.1×ΔA÷Cpr 2.按照样本质量计算 酶活性定义: 40℃,pH5.5条件下,每克组织每分钟分解果胶产 1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位、/span> PL活?U/g质量)=ΔA÷(ε×d)×V反总?09÷(V样×W÷V样?÷T= 64.1×ΔA÷W 3.按照细菌、真菌数量计箖/span> 酶活性定义: 40℃,pH5.5条件下, 104个细胞每分钟分解果胶产生 1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位、/span> PL活?U/104cell)= ΔA÷(ε×d)×V反总?09÷(V样×细胞数量÷V样?÷T= 64.1×ΔA÷细胞数量 4.按照培养液体积计箖/span> 酶活性定义: 40℃,pH5.5条件下,每毫升培养液每分钟分解果胶产 1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位、/span> PL活?U/ml)=ΔA÷(ε×d)×V反总?09÷V样÷T= 64.1×ΔA ε:不饱和半乳糖醛酸摩尔消光系数:5200L/mol/cm;d:比色皿光径?cm;V反总:反应总体积,0.0002L;V样:反应体系中样本体积,0.02ml;V样总:加入提取液体积,1ml;Cpr:样本蛋白浓度,mg/ml;W,样本质量,g;T:反应时间,30min?09:换算系数,1mol=109nmol、/span> B、按96UV板计算: 将上述公式中 d-1cm修改 d-0.6cm(96孔板光径)进行计算即可、/span> 注意事项9/span> 1.若ΔA大于 0.5,将粗酶液用蒸馏水稀释后再进行测定。若 A测定管大 1.5时,建议将样本用蒸馏水稀释后再进行测定、/span> 2.建议一次测定不要测定过多样本以免耽误过多的酶促反应时间、/span> 3.空白管正常情况下变化不超 0.02、/span> |
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